Product details
斑節對蝦杆狀病毒熒光PCR檢測試劑盒
檢測方法:熒光PCR
産(chǎn)品規格:50T
保存條件:-20℃±5℃,避光保存
有(yǒu)效期:12個月
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産(chǎn)品介紹
【産(chǎn)品名(míng)稱】斑節對蝦杆狀病毒熒光PCR檢測試劑盒(熒光PCR法)
【包裝(zhuāng)規格】50T/盒
【預期用(yòng)途】
本試劑盒适用(yòng)于檢測的扁桃體(tǐ)、淋巴結等組織病變部與健康部交界處組織、全血等标本中(zhōng)斑節對蝦杆狀病毒DNA,适用(yòng)于斑節對蝦杆狀病毒感染的輔助診斷。
【檢驗原理(lǐ)】
本試劑盒采用(yòng)TaqMan探針法實時熒光PCR技(jì )術,通過設計一對斑節對蝦杆狀病毒特異性引物(wù),結合一條特異性探針,用(yòng)熒光PCR技(jì )術對斑節對蝦杆狀病毒的核酸進行體(tǐ)外擴增檢測,用(yòng)于臨床上對可(kě)疑感染者的病原學(xué)診斷。
【試劑組成】
名(míng) 稱
規 格
Taq酶液
25μL×1管
MBV反應液
1100μL×1管
MBV陽性質(zhì)控品
200μL×1管
陰性質(zhì)控品
200μL×1管
備注:不同批号的試劑盒組分(fēn)不宜交叉使用(yòng)。
【儲存條件及有(yǒu)效期】
-20℃±5℃,避光保存、運輸、反複凍融≤5次,有(yǒu)效期12個月。
【适用(yòng)儀器】
ABI系列 、安(ān)捷倫MX3000P/3005P、Bio-Rad等系列熒光定量PCR檢測儀。
【标本采集】
病死或撲殺動物(wù),取分(fēn)泌物(wù)、血液、肌肉等
【保存和運輸】
上述标本短期内可(kě)保存于-20℃,長(cháng)期保存可(kě)置-70℃,但不能(néng)超過6個月,标本運送應采用(yòng)2~8℃冰袋運輸,嚴禁反複凍融。
【使用(yòng)方法】
1. 樣品處理(lǐ)(樣本處理(lǐ)區(qū))
1.1樣本前處理(lǐ)
組織樣品:每份組織分(fēn)别從3個不同的位置稱取樣品約1g,手術剪剪碎混勻後取0.5g于研磨器中(zhōng)研磨,加入1.5mL生理(lǐ)鹽水後繼續研磨,待勻漿後轉至1.5mL滅菌離心管中(zhōng),8000rpm離心2min,取上清液100μL于1.5mL滅菌離心管中(zhōng);全血樣本:待血凝固後,取血清100μL于1.5mL滅菌離心管中(zhōng)。
1.2核酸提取
按照相應DNA核酸提取試劑盒進行核酸提取,核酸提取産(chǎn)物(wù)-20℃保存。
2. 試劑配制(試劑準備區(qū))
根據待檢測樣本總數,設所需要的PCR反應管管數為(wèi)N(N=樣本數+1管陰性對照+1管陽性對照,每個測試反應體(tǐ)系配制如下表:
試劑
MBV反應液
酶液
用(yòng)量(樣本數為(wèi)N)
20μL
0.5μL
3. 加樣(樣本處理(lǐ)區(qū))
将步驟1提取的DNA、陽性質(zhì)控品、陰性質(zhì)控品各取5μL,分(fēn)别加入相應的反應管中(zhōng),蓋好管蓋,混勻,短暫離心。
4. PCR擴增(核酸擴增區(qū))
4.1 将待檢測反應管置于熒光定量PCR儀反應槽内;
4.2 設置好通道、樣品信息,反應體(tǐ)系設置為(wèi)25μL;
熒光通道選擇: 檢測通道選擇FAM, 淬滅通道選擇NONE,參比熒光選NONE。
4.3 推薦循環參數設置:
步驟
循環數
溫度
時間
收集熒光信号
1
1 cycle
95℃
3min
否
2
40 cycles
94℃
15sec
否
55℃
30sec
是
5. 結果分(fēn)析判定
5.1結果分(fēn)析條件設定
5.2設置Baseline和Threshold:一般直接按機器自動分(fēn)析的結果分(fēn)析,當曲線(xiàn)出現整體(tǐ)傾斜時,根據分(fēn)析後圖像調節Baseline的start值(一般可(kě)在3~15範圍内調節)、stop值(一般可(kě)在5~20範圍内調節),以及Threshold的Value值(上下拖動阈值線(xiàn)至高于陰性對照),重新(xīn)分(fēn)析結果。
5.3結果判斷
陽性:檢測通道Ct值≤35.0,且曲線(xiàn)有(yǒu)明顯的指數增長(cháng)曲線(xiàn)。
可(kě)疑:檢測通道Ct值>35.0,且出現典型擴增曲線(xiàn)的樣本建議重複試驗,重複試驗結果出現Ct值≤35.0和典型擴增曲線(xiàn)者為(wèi)陽性,否則為(wèi)陰性。
陰性:樣本檢測結果無Ct值且無明顯的擴增曲線(xiàn)。
6. 質(zhì)控标準
陰性質(zhì)控品:無明顯擴增曲線(xiàn)或無Ct值顯示;
陽性質(zhì)控品:擴增曲線(xiàn)有(yǒu)明顯指數生長(cháng)期,且Ct值≤30;
以上條件應同時滿足,否則實驗視為(wèi)無效。
7. 檢測方法的局限性
Ø 樣本檢測結果與樣本收集、處理(lǐ)、運送以及保存質(zhì)量有(yǒu)關;
Ø 樣本提取過程中(zhōng)沒有(yǒu)控制好交叉污染,會出現假陽性結果;
Ø 陽性對照、擴增産(chǎn)物(wù)洩漏,會導緻假陽性結果;
Ø 病原體(tǐ)在流行過程中(zhōng)基因突變、重組,會導緻假陰性結果;
Ø 不同的提取方法存在提取效率差異,會導緻假陰性結果;
Ø 試劑運輸,保存不當或試劑配制不準确引起的試劑檢測效能(néng)下降,出現假陰性或定量檢測不準确的結果;
Ø 本檢測結果僅供參考,如須确診請結合臨床症狀以及其他(tā)檢測手段。
【注意事項】
Ø 所有(yǒu)操作(zuò)嚴格按照說明書進行;
Ø 試劑盒内各種組分(fēn)使用(yòng)前應自然融化,完全混勻并短暫離心;
Ø 反應液應避光保存;
Ø 反應中(zhōng)管蓋需蓋緊;
Ø 使用(yòng)一次性吸頭、一次性手套和各區(qū)專用(yòng)工(gōng)作(zuò)服;
Ø 樣本處理(lǐ)、試劑配制、加樣需在不同區(qū)進行,以免交叉污染;
Ø 實驗完畢後用(yòng)10%次氯酸或75%酒精(jīng)或紫外燈處理(lǐ)工(gōng)作(zuò)台和移液器;
Ø 試劑盒裏所有(yǒu)物(wù)品應視為(wèi)污染物(wù)對待,并按照《微生物(wù)生物(wù)醫(yī)學(xué)實驗室生物(wù)安(ān)全通則》進行處理(lǐ)。